Kompetenzprofile der Technischen Mitarbeiterinnen und Mitarbeiter

AG Bioverfügbarkeit   (Dr. Lukas Wick)

Franziska Beier
  • Isolation, Anreicherung und Kultivierung aerober Mikroorganismen
  • Hochdurchsatz-Quantifizierung von Bakterien mittels Spiralplattierung und automatischer Kolonieauszählung
  • Kultivierung und Quantifizierung von Bakteriophagen
  • Kultivierung von Pilzen
  • Chemische Analytik organischer Stoffe: HPLC (UV/Fluoreszenz/Brechungsindex)
  • Visualisierung von Pilz und Bakterien: Mikroskop Nikon AZ 100
  • DNA Extraktion und qPCR
Jana Reichenbach
  • Isolation, Anreicherung, Kultivierung und Quantifizierung aerober Mikroorganismen (Pilze und Bakterien)
  • Hochdurchsatz-Quantifizierung von Bakterien mittels Spiralplattierung und automatischer Kolonieauszählung
  • Bestimmung der Oberflächenhydrophobizität mikrobieller Oberflächen (Kontaktwinkelmessungen)
  • Bestimmung der Oberflächenspannung von Lösungen
  • Bestimmung des Schwimmverhaltens von Bakterien (Chemotaxie, Schwimm- und Schwärmverhalten)
Birgit Würz
  • Isolation, Anreicherung, Kultivierung und Quantifizierung aerober Mikroorganismen (Pilze und Bakterien)
  • Chemische Analytik organischer Stoffe: GC-FID, GC-ECD, GC-MS, Headspace
  • Extraktion und Analyse organischer Spurenstoffe
  • Bestimmung der Partikelgröße, Partikelkonzentration und der phys.-chem. Oberflächeneigenschaften (Isoelektischer Punkt, Zeta-Potenzial) von Bio-Kolloiden und Makromolekülen (Zeta-Sizer ULTRA)
  • Webseiten-Design und -Pflege

AG Elektrobiotechnologie   (Prof. Falk Harnisch)

Cornelia Dilßner
  • Aerobe und anaerobe Anreicherung/Isolierung von Mikroorganismen
  • Schadstoffabbau (Kinetik und Stöchiometrie)
  • Fermenterkulturen incl. diverser Kultivierungsregime
  • HPLC-Technik (Messung sowie Gerätebetreuung Shimadzu)
  • Enzymmessung (photometrisch, respiratorisch)
  • Zellaufschluss-Methoden
  • Abwasseranalytik
Anne Kuchenbuch
  • Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
  • HPLC-Analytik
  • DNA-Extraktion
  • PCR- und T-RFLP-Fingerprinting
  • Klonierung und Sequenzierung
  • Bioelektrochemische Methoden
  • Bioelektrochemische Fermentation
  • Fluoreszenz- und Lichtmikroskopie
Angelika Wichmann
  • GC-MS
  • Fettsäureanalytik
  • Chemostat-Bakterienkultivierung
  • VOC-Analytik
  • Metabolitenanalytik
Philip Haus
(Auszubildender)
  • Aerobe und anaerobe Kultivierung von Rein- und Mischkulturen
  • HPLC-Analytik
  • DNA-Extraktion, PCR- und T-RFLP-Fingerprinting

AG Flow Cytometrie   (Prof. Susann Müller)

Dr. Zishu Liu
  • Zytometrie
  • Zellsortierung
  • Kontinuierliche Bioreaktoren
  • Zytometrisches Stabilitätskonzept (R)
Florian Schattenberg
  • Zytometrie
  • Zellsortierung
  • DNA-Extraktion, PCR- und T-RFLP- Fingerprinting
  • Laserschutzbeauftragter (Dept. UMB)
Christine Süring
  • Fermentation
  • Zytometrie
  • Image Analyse
Lena Feißel
(Auszubildende)
  • Zytometrie
  • Fluoreszenz- und Lichtmikroskopie
  • Image Analyse

AG Microbial Data Science   (Dr. Ulisses Nunes da Rocha)

Rodolfo Brizola Toscan

Bearbeitung von Hochdurchsatz-Sequenzierdaten (HTS):
  • Funktionale Beschreibung von HTS
  • Genomrekonstruktion aus Metagenom-Datensätzen (Eukaryoten, Prokaryoten und Viren)
  • Mikrobielle HTS-Simulation
IT-Expertise:
  • Datenspeicherung und Life cycle-Management
  • Installation und Entwicklung von Software, Tools und Pipelines für die (Multi-) Omics-Analyse
  • Python, BASH, R, Perl und C

AG Mikrobielle Interaktionsökologie   (Prof. Antonis Chatzinotas)

Anett Heidtmann
  • DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
  • PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
  • Quantitative PCR
  • Sequenzierung (inkl. Software) und ARB-Software (Stammbäume)
  • Mikroskopie
  • FISH und Hybridisierungen
  • Phagen (Aufkonzentrierung, Molekularbiologie)
  • Ausbildung von BiologielaborantInnen am UFZ
Nicole Steinbach
  • DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
  • PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
  • Sequenzierung (inkl. Software)
  • Anreicherung/Kultivierung von Bakterien
  • Viren/Phagen (Aufkonzentrierung, Molekularbiologie)
  • Stable Isotope Probing (SIP)
Josephine Arnold
(Auszubildende)
  • DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
  • PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
  • Mikroskopie

AG Mikrobiologie anaerober Systeme   (Dr. Sabine Kleinsteuber)

Elke Häusler
  • DNA-Extraktion (Reaktorproben, Kulturen)
  • PCR
  • Klonierung und Sanger-Sequenzierung
  • T-RFLP-Fingerprinting
Ute Lohse
  • DNA- und RNA-Extraktion (Kulturen, Reaktor- und Umweltproben)
  • Proteinextraktion für Proteomik
  • c-DNA-Synthese, PCR, qPCR
  • T-RFLP-Fingerprinting (inkl. Genemapper-Auswertung)
  • Klonierung
  • Sanger-Sequenzierung (inkl. Sequencher-Auswertung)
  • FISH, CARD-FISH
  • Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
  • Anaerobe Probenahme
Friederike Koppius
(Auszubildende)

  • DNA-und RNA-Extraktion (Kulturen, Reaktorproben)
  • PCR
  • T-RFLP-Fingerprinting
  • Sanger-Sequenzierung
  • Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
  • HPLC
  • GC

AG Ökothermodynamik / Biokalorimetrie   (PD Dr. Thomas Maskow)

Claudia Heber
  • Reaktionskalorimetrie
  • Mikrokalorimetrie (Photokalorimetrie)
  • HPLC-Analytik
  • Hochauflösende Respirometrie
  • Luminometrie
  • Fermentationen
  • Stammhaltung und -kultivierung
Sven Paufler
  • Entwicklung von Hard- und Software zur Datenaquisition
  • Mikro- und Reaktionskalorimetrie
  • Fermentationen
  • Verbrennungskalorimetrie
Monique Reichard
(Auszubildende)
  • Photokalorimetrie
  • Isotherme Titrationskalorimetrie
  • Mikroskopie
  • HPLC-Analytik

AG Umweltmykologie   (Dr. Dietmar Schlosser)

Madlen Schubert
  • Kryokonservierung von Mikroorganismen
  • Ultra Performance Liquid Chromatography (UPLC)
  • Enzymassays (Mikrotiterplatten-Reader)
  • FTIR-spektroskopische Messungen
  • Kultivierung von Pilzen

Spül- und Nährbodenstation   (Martina Kolbe)

Mandy Becker
  • Mikrobiologische Entsorgung
  • Heißluftsterilisation
  • Reinigung von Laborglas
  • Autoklavieren
  • Aerobe und anaerobe Nährmedien
Martina Kolbe
  • Aerobe und anaerobe Nährmedien
  • Autoklavieren spezieller Laborgeräte und Lösungen
  • Spezifische Sterilisations- und Desinfektionmethoden
  • Mikrobiologischen Entsorgung, Sterilisation und Desinfektion
  • Fragen zu Nährmedien
Katrin Lübke
  • Aerobe und anaerobe Nährmedien und Lösungen
  • Heißluftsterilisation
  • Autoklavieren
  • Mikrobiologische Entsorgung
Alina Lea Böhm
(Auszubildende)
  • Nährlösungen
  • Verschiedene Sterilisationsmethoden
  • Mikrobiologische Entsorgung