Protein stable-isotope probing (Protein-SIP) für funktionale Metaproteomics
Projektbeschreibung
Für die Charakterisierung von mikrobiellen Lebensgemeinschaften wurde in Kooperation mit dem Department Isotopenbiogeochemie das Protein-SIP-Verfahren (SIP = „stable isotope probing“) entwickelt, dass die gleichzeitige Bestimmung der Spezies und ihrer metabolischen Aktivität ermöglicht. So ist es möglich, mikrobielle Gemeinschaften auf taxonomischer und funktioneller Ebene zu untersuchen.
1 Differenzieller 13C Einbau durch Assimilation
Die Assimilation von schweren, stabilen Isotopen in die Biomoleküle verschiedener Spezies ist abhängig vom Umsatz und der metabolischen Aktivität der Spezies. Der Einbau stabiler 13C Isotope durch ein Substrat kann zum Nachweis der metabolisch-aktiven Spezies innerhalb einer Lebensgemeinschaft genutzt werden. Die verschiedenen Einbaustufen werden durch die Intensität der Blaufärbung verdeutlicht.
2 Referenzkurven ermöglichen Quantifizierung
Nach der Zellernte und Proteinextraktion werden die Proben proteolytisch behandelt und mittels Massenspektrometrie analysiert. Die Isotopologen werden, je nach Einbau schwerer Isotope in die Proteine, in einem höheren Massenbereich detektiert. Ein höherer Einbaugrad steht für eine stärkere Assimilation und demzufolge für eine primäre Rolle der Spezies bei der Nutzung des markierten Substrates innerhalb des Nahrungsnetzes.
Der Einbau schwerer, stabiler Isotope in die Peptide / Proteine kann durch die Anwendung der ‚Halben Dezimalstellen Regel’ abgeschätzt werden.
3 Wechselwirkungen in Nahrungsnetzen analysiert durch Kohlenstoffflüsse
Peptide ermöglichen eine phylogenetische Information zur strukturellen Aufklärung der Lebensgemeinschaft und zur physiologischen Beschreibung des aktuellen Zustandes der mikrobiellen Zellen.
Anhand dieser Informationen können Kohlenstoffflüsse und Nahrungsnetzwerke aufgeklärt werden und sie helfen im Weiteren die Interaktionen innerhalb der mikrobiellen Lebensgemeinschaften zu verstehen.

Abb.1 Protein-SIP Prinzip
Beteiligte Wissenschaftler
Kooperationen
- Carsten Vogt, Petra Bombach, Hans-Hermann Richnow; Dep. Isotopenbiogeochemie
- Brandon E. Morris, Josef M. Suflita, University of Oklahoma
- Michael Siegert, Martin Krüger, BGR Hannover
- Sara Kleindienst, Katrin Knittel, MPI für Marine Mikrobiologie Bremen
- Sascha Krause, Paul Bodelier; Netherlands Institute of Ecology
- Michael Pester, Universität Wien
Publikationen
Jehmlich N, Schmidt F, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2008) Protein-based stable isotope probing (protein-SIP) reveals active species within anoxic mixed cultures.
ISME J. 2: 1122-1133.
Jehmlich N, Schmidt F, Hartwich M, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2008) Incorporation of carbon and nitrogen atmos into proteins measured by protein-based stable isotope probing (Protein-SIP).
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Jehmlich N, Schmidt F, Taubert M, Seifert J, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2009) Comparison of methods for simultaneous identification of bacterial species and determination of metabolic activity by protein-based stable isotope probing (Protein-SIP) experiments.
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Jehmlich N, Fetzer I, Seifert J, Mattow J, Vogt C, Harms H, Thiede B, Richnow HH, von Bergen M, Schmidt F (2010) Decimal place slope: a fast and precise method for quantifying 13C incorporation levels for detecting the metabolic activity of microbial species.
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Bastida, F, Jechalke, S, Bombach, P, Franchini, AG, Seifert, J, von Bergen, M, Vogt, C, Richnow, HH (2011) Assimilation of benzene carbon through multiple trophic levels traced by different stable isotope probing methodologies.
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Taubert, M, Vogt, C, Wubet, T, Kleinsteuber, S, Tarkka, MT, Harms, H, Buscot, F, Richnow, HH, von Bergen, M, Seifert, J (2012) Protein-SIP enables time-resolved analysis of the carbon flux in a sulfate-reducing, benzene-degrading microbial consortium.
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