Protein stable-isotope probing (Protein-SIP) für funktionale Metaproteomics

Projektbeschreibung

Für die Charakterisierung von mikrobiellen Lebensgemeinschaften wurde in Kooperation mit dem Department Isotopenbiogeochemie das Protein-SIP-Verfahren (SIP = „stable isotope probing“) entwickelt, dass die gleichzeitige Bestimmung der Spezies und ihrer metabolischen Aktivität ermöglicht. So ist es möglich, mikrobielle Gemeinschaften auf taxonomischer und funktioneller Ebene zu untersuchen.

1 Differenzieller 13C Einbau durch Assimilation

Die Assimilation von schweren, stabilen Isotopen in die Biomoleküle verschiedener Spezies ist abhängig vom Umsatz und der metabolischen Aktivität der Spezies. Der Einbau stabiler 13C Isotope durch ein Substrat kann zum Nachweis der metabolisch-aktiven Spezies innerhalb einer Lebensgemeinschaft genutzt werden. Die verschiedenen Einbaustufen werden durch die Intensität der Blaufärbung verdeutlicht.

2 Referenzkurven ermöglichen Quantifizierung

Nach der Zellernte und Proteinextraktion werden die Proben proteolytisch behandelt und mittels Massenspektrometrie analysiert. Die Isotopologen werden, je nach Einbau schwerer Isotope in die Proteine, in einem höheren Massenbereich detektiert. Ein höherer Einbaugrad steht für eine stärkere Assimilation und demzufolge für eine primäre Rolle der Spezies bei der Nutzung des markierten Substrates innerhalb des Nahrungsnetzes.
Der Einbau schwerer, stabiler Isotope in die Peptide / Proteine kann durch die Anwendung der ‚Halben Dezimalstellen Regel’ abgeschätzt werden.

3 Wechselwirkungen in Nahrungsnetzen analysiert durch Kohlenstoffflüsse

Peptide ermöglichen eine phylogenetische Information zur strukturellen Aufklärung der Lebensgemeinschaft und zur physiologischen Beschreibung des aktuellen Zustandes der mikrobiellen Zellen.
Anhand dieser Informationen können Kohlenstoffflüsse und Nahrungsnetzwerke aufgeklärt werden und sie helfen im Weiteren die Interaktionen innerhalb der mikrobiellen Lebensgemeinschaften zu verstehen.

Prinicple of Protein-SIP

Abb.1 Protein-SIP Prinzip

Beteiligte Wissenschaftler

Kooperationen

  • Carsten Vogt, Petra Bombach, Hans-Hermann Richnow; Dep. Isotopenbiogeochemie
  • Brandon E. Morris, Josef M. Suflita, University of Oklahoma
  • Michael Siegert, Martin Krüger, BGR Hannover
  • Sara Kleindienst, Katrin Knittel, MPI für Marine Mikrobiologie Bremen
  • Sascha Krause, Paul Bodelier; Netherlands Institute of Ecology
  • Michael Pester, Universität Wien

Publikationen

Jehmlich N, Schmidt F, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2008) Protein-based stable isotope probing (protein-SIP) reveals active species within anoxic mixed cultures.
ISME J. 2: 1122-1133.

Jehmlich N, Schmidt F, Hartwich M, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2008) Incorporation of carbon and nitrogen atmos into proteins measured by protein-based stable isotope probing (Protein-SIP).
Rapid Commun Mass Spectrom. 22: 2889-2897.

Jehmlich N, Schmidt F, Taubert M, Seifert J, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2009) Comparison of methods for simultaneous identification of bacterial species and determination of metabolic activity by protein-based stable isotope probing (Protein-SIP) experiments.
Rapid Commun Mass Spectrom 23:1871-1878. 

Jehmlich N, Fetzer I, Seifert J, Mattow J, Vogt C, Harms H, Thiede B, Richnow HH, von Bergen M, Schmidt F (2010) Decimal place slope: a fast and precise method for quantifying 13C incorporation levels for detecting the metabolic activity of microbial species.
Mol Cell Proteomics. 9:1221-1227.

Fetzer I, Jehmlich N, Vogt C, Richnow HH, Seifert J, Harms H, von Bergen M, Schmidt F (2010) Calculation of partial isotope incorporation into peptides measured by mass spectrometry.
BMC Res Notes. Jun 24;3(1):178.

Bastida F, Rosell M, Franchini AG, Seifert J, Finsterbusch S, Jehmlich J, Jechalke S, von Bergen M, Richnow HH (2010) Elucidating MTBE degradation in a mixed consortium using a multidisciplinary approach.
FEMS Microbiol Ecol. 73(2):370-84.

Jehmlich N, Schmidt F, Taubert M, Seifert J, Bastida F, von Bergen M, Richnow HH, Vogt C (2010) Protein-stable isotope probing (Protein-SIP).
Nature Protocols. 5 (12), 1957-1966.

Jehmlich N, Seifert J, Taubert M, Schmidt F, Vogt C, Richnow HH, von Bergen M (2011) Protein Stable Isotope Probing.
In: Murrell JC, Whiteley AS (eds) Stable isotope probing and related technologies. ASM Press, Washington    

Taubert, M, Baumann, S, von Bergen, M, Seifert, J (2011) Exploring the limits of robust detection of incorporation of 13C by mass spectrometry in protein-based stable isotope probing (protein-SIP).
Anal. Bioanal. Chem. 401 (6), 1975-1982.

Bastida, F, Jechalke, S, Bombach, P, Franchini, AG, Seifert, J, von Bergen, M, Vogt, C, Richnow, HH (2011) Assimilation of benzene carbon through multiple trophic levels traced by different stable isotope probing methodologies.
FEMS Microbiol Ecol. 77 (2), 357-369.

Taubert, M, Jehmlich, N, Schmidt, F, Vogt, C, Richnow, HH, von Bergen, M, Seifert, J (2011) Time resolved protein-based stable isotope probing (Protein-SIP) analysis allows quantification of induced proteins in substrate shift experiments.
Proteomics. 11 (11), 2265–2274.     

Jehmlich, N, Kopinke, FD, Lenhard, S, Herbst, FA, Seifert, J, Lissner, U, Völker, U, Schmidt, F, von Bergen, M. (2012) Sulphur-36S stable isotope labeling of amino acids for quantification (SULAQ).
Proteomics. 12 (1), 37-42.

Morris, BEL, Herbst, FA, Bastida, F, Seifert, J, von Bergen, M, Richnow, HH, Suflita, J (2012) Microbial interactions during residual oil and n-fatty acid metabolism by a methanogenic consortium.
Env. Microbiol. Rep. 4(3), 297-306

Kermer, R, Hedrich, S, Taubert, M, Baumann, S, Schlömann, M, Johnson, DB, von Bergen, M, Seifert, J (2012) Elucidation of carbon transfer in a mixed culture of Acidiphilium cryptum and Acidithiobacillus ferrooxidans using protein-based stable isotope probing.
JIOMICS. 2(1): 37-45. doi: 10.5584/jiomics.v2012i2012.85

Bozinovski, D, Herrmann, S, Richnow, HH, von Bergen, M, Seifert, J, Vogt, C (2012) Functional analysis of an anaerobic m-xylene degrading enrichment culture using protein-based stable isotope probing. FEMS Microbiol. Ecol. 81(1):134-144

Seifert, J, Taubert, M, Jehmlich, N, Schmidt, F, Völker, U, Vogt, C, Richnow, HH, von Bergen, M (2012) Protein-based stable isotope probing in functional metaproteomics.
Mass Spectrom. Rev. 31 (6), 683-697

Marco-Urrea, E, Seifert, J, von Bergen, M, Lorenz, A (2012) Application of stable isotope peptide mass spectrometry to decipher amino acid metabolism in Dehalococcoides strain CBDB1.
J. Bact. 194 (16), 4169-4177

Taubert, M, Vogt, C, Wubet, T, Kleinsteuber, S, Tarkka, MT, Harms, H, Buscot, F, Richnow, HH, von Bergen, M, Seifert, J (2012) Protein-SIP enables time-resolved analysis of the carbon flux in a sulfate-reducing, benzene-degrading microbial consortium.
ISME J. 6 (12), 2291 - 2301
            


Förderung

aktuelle Publikationen

Kliemt S, Lange C, Otto W, Hintze V, Möller S, von Bergen M, Hempel U, Kalkhof S.
Sulfated hyaluronan containing collagen matrices enhance cell-matrix-interaction, endocytosis, and osteogenic differentiation of human mesenchymal stromal cells.
J Proteome Res. 2012 Nov 21. [Epub ahead of print] PMID:23170904

Haange SB, Oberbach A, Schlichting N, Hugenholtz F, Smidt H, von Bergen M, Till H, Seifert J.
Metaproteome analysis and molecular genetics of rat intestinal microbiota reveals section and localisation resolved species distribution and enzymatic functionalities.
J Proteome Res. 2012 Nov 2;11(11):5406-17. PMID: 23016992

Müller SA, van der Smissen A, von Feilitzsch M, Anderegg U, Kalkhof S, von Bergen M.
Quantitative proteomics reveals altered expression of extracellular matrix related proteins of human primary dermal fibroblasts in response to sulfated hyaluronan and collagen applied as artificial extracellular matrix.
J Mater Sci Mater Med. 2012 Dec;23(12):3053-65. PMID: 22990618

Goettsch C, Kliemt S, Sinningen K, von Bergen M, Hofbauer LC, Kalkhof S.
Quantitative proteomics reveals novel functions of osteoclast-associated receptor in STAT signaling and cell adhesion in human endothelial cells.
J Mol Cell Cardiol. 2012 Dec;53(6):829-37. PMID: 22985931

Salbach J, Kliemt S, Rauner M, Rachner TD, Goettsch C, Kalkhof S, von Bergen M, Möller S, Schnabelrauch M, Hintze V, Scharnweber D, Hofbauer LC.
The effect of the degree of sulfation of glycosaminoglycans on osteoclast function and signaling pathways.
Biomaterials 2012 Nov;33(33):8418-29. PMID: 22954516

Guazzaroni ME, Herbst FA, Lores I, Tamames J, Peláez AI, López-Cortés N, Alcaide M, Del Pozo MV, Vieites JM, von Bergen M, Gallego JL, Bargiela R, López-López A, Pieper DH, Rosselló-Móra R, Sánchez J, Seifert J, Ferrer M.
Metaproteogenomic insights beyond bacterial response to naphthalene exposure and bio-stimulation.
ISME J. 2012 Jul 26. doi: 10.1038/ismej.2012.82.[Epub ahead of print] PMID: 22832345

Taubert M, Vogt C, Wubet T, Kleinsteuber S, Tarkka MT, Harms H, Buscot F, Richnow HH, von Bergen M, Seifert J
Protein-SIP enables time-resolved analysis of the carbon flux in a sulfate-reducing, benzene-degrading microbial consortium.
ISME J. 2012 Jul 12. doi: 10.1038/ismej.2012.68. [Epub ahead of print] PMID: 22791237.


Boll K, Reiche K, Kasack K, Mörbt N, Kretzschmar AK, Tomm JM, Verhaegh G, Schalken J, von Bergen M, Horn F, Hackermüller J.
MiR-130a, miR-203 and miR-205 jointly repress key oncogenic pathways and are downregulated in prostate carcinoma.
Oncogene. 2012 Mar 5. doi: 10.1038/onc.2012.55. [Epub ahead of print] PubMed PMID: 22391564.


Haas S, Jahnke HG, Moerbt N, von Bergen M, Aharinejad S, Andrukhova O, Robitzki AA
DIGE proteome analysis reveals suitability of ischemic cardiac in vitro model for studying cellular response to acute ischemia and regeneration.
PLoS One. 2012;7(2):e31669. Epub 2012 Feb 22. PubMed PMID: 22384053