Kompetenzprofile der Technischen Mitarbeiterinnen und Mitarbeiter

AG Bioverfügbarkeit
(Dr. Lukas Wick)

Jana Reichenbach Chemotaxie
Kontaktwinkelmessungen mikrobieller Oberflächen
Kultivierung von Bakterien und Pilzen
Spiralplattierer mit automatisierter Kolonieauszählung
Rita Remer HPLC (UV/Fluoreszenz/Brechungsindex)
Ionenchromatographie
Spiralplattierer mit automatisierter Kolonieauszählung
Kultivierung von Bakterien und Pilzen
Birgit Würz GC-Headspace
GC-MS
Zeta-Sizer nano: Bestimmung von Zeta-Potenzial und isolelektrischem Punkt von Bio-Kolloiden/Makromolekülen
Extraktion und Analyse organischer Spurenstoffe
Franziska Beier
(Auszubildende)
Isolation, Anreicherung und Kultivierung aerober Mikroorganismen
Kultivierung und Auszählen von Bakteriophagen

AG Flow Cytometrie
(Prof. Susann Müller)

Thomas Hübschmann Zytometrie
Zellsortierung
Laserverantwortlicher (Dept. UMB)
Florian Schattenberg Zytometrie
Zellsortierung
DNA-Extraktion, PCR- und T-RFLP- Fingerprinting
Christine Süring Fermentation
Zytometrie
Image Analyse

AG Mikrobielle Bioelektrokatalyse und Bioelektrotechnologie
(PD Dr. Falk Harnisch)

Cornelia Dilßner Aerobe und anaerobe Anreicherung/Isolierung von Mikroorganismen
Schadstoffabbau (Kinetik und Stöchiometrie)
Fermenterkulturen incl. diverser Kultivierungsregime
HPLC-Technik (Messung sowie Gerätebetreuung Shimadzu)
Enzymmessung (photometrisch, respiratorisch)
Zellaufschluss-Methoden
Abwasseranalytik
Anne Kuchenbuch Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
HPLC-Analytik
DNA-Extraktion
PCR- und T-RFLP-Fingerprinting
Klonierung und Sequenzierung
Bioelektrochemische Methoden
Bioelektrochemische Fermentation
Fluoreszenz- und Lichtmikroskopie
Desiree Schmidt
Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
HPLC-Analytik
DNA-Extraktion
PCR- und T-RFLP-Fingerprinting
Klonierung und Sequenzierung
Angelika Wichmann GC-MS
Fettsäureanalytik
Chemostat-Bakterienkultivierung
VOC-Analytik
Metabolitenanalytik

AG Mikrobielle Systemökologie
(Dr. Antonis Chatzinotas)

Anett Heidtmann DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
Quantitative PCR
Sequenzierung (inkl. Software) und ARB-Software (Stammbäume)
Mikroskopie
FISH und Hybridisierungen
Phagen (Aufkonzentrierung, Molekularbiologie)
Ausbildung von BiologielaborantInnen am UFZ
Verena Jaschik DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
PCR (16 und 18S rRNA Gene) und T-RFLP
Sequenzierung (inkl. Software)
Quantitative PCR
Stammsammlung Protisten und Bakterien
Nicole Steinbach
DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
Sequenzierung (inkl. Software)
Anreicherung/Kultivierung von Bakterien
Viren/Phagen (Aufkonzentrierung, Molekularbiologie)
Stable Isotope Probing (SIP)
Jonathan Seltmann
(Auszubildender)
DNA-/RNA-Isolierung (Umweltproben, Kulturen)
PCR (16S rRNA, funktionelle Gene, Plasmide) und T-RFLP
Mikroskopie

AG Mikrobiologie anaerober Systeme
(Dr. Sabine Kleinsteuber)

Elke Häusler DNA-Extraktion (Reaktorproben, Kulturen)
PCR
Klonierung und Sanger-Sequenzierung
T-RFLP-Fingerprinting
Ute Lohse DNA- und RNA-Extraktion (Kulturen, Reaktor- und Umweltproben)
Proteinextraktion für Proteomik
c-DNA-Synthese, PCR, qPCR
T-RFLP-Fingerprinting (inkl. Genemapper-Auswertung)
Klonierung
Sanger-Sequenzierung (inkl. Sequencher-Auswertung)
FISH, CARD-FISH
Aerobe und anaerobe Kultivierung von Mikroorganismen
Anaerobe Probenahme
Lisa-Marie Bangen
(Auszubildende)
Anaerobkultivierung, Anreicherung und Isolation anaerober Mikroorganismen, anaerobe Probenahme
HPLC (UV, Brechungsindex)
GC (H2, CO2, N2, CH4, O2)
DNA-Extraktion (Reaktorproben, Kulturen)
PCR
T-RFLP-Fingerprinting

AG Ökothermodynamik / Biokalorimetrie
(PD Dr. Thomas Maskow)

Claudia Heber
Reaktionskalorimetrie
Mikrokalorimetrie (Photokalorimetrie)
HPLC-Analytik
Hochauflösende Respirometrie
Luminometrie
Fermentationen
Stammhaltung und -kultivierung
Sven Paufler Entwicklung von Hard- und Software zur Datenaquisition
Mikro- und Reaktionskalorimetrie
Fermentationen
Verbrennungskalorimetrie
Kurt-Tobias Mühler
(Auszubildender)
Photokalorimetrie
Fermentationen
HPLC-Analytik
Monique Reichard
(Auszubildende)
Photokalorimetrie
Isotherme Titrationskalorimetrie
Mikroskopie
HPLC-Analytik

AG Umweltmykologie
(Dr. Dietmar Schlosser)

Madlen Schubert Kryokonservierung von Mikroorganismen
Ultra Performance Liquid Chromatography (UPLC)
Enzymassays (Mikrotiterplatten-Reader)
FTIR-spektroskopische Messungen
Kultivierung von Pilzen

Spül- und Nährbodenstation
(Martina Kolbe)

Mandy Becker
Mikrobiologische Entsorgung
Heißluftsterilisation
Reinigung von Laborglas
Autoklavieren
Herstellung einfacher Nährlösungen
Martina Kolbe Aerobe und anaerobe Nährmedien
Autoklavieren spezieller Laborgeräte und Lösungen
Spezifische Sterilisations- und Desinfektionmethoden
Mikrobiologischen Entsorgung, Sterilisation und Desinfektion
Fragen zu Nährmedien
Katrin Lübke Aerobe und anaerobe Nährmedien und Lösungen
Heißluftsterilisation
Autoklavieren
Mikrobiologische Entsorgung