Kompetenzprofile der Technischen Mitarbeiter/innen im Department UMB
Stand: November 2011
AG Mikrobielle Physiologie (Roland Müller)
| Cornelia Dilßner |
Anreicherung/Isolierung von MO; Schadstoffabbau (Kinetik und Stöchiometrie); Fermenterkulturen incl. diverser Kultivierungsregime; HPLC Technik (Messung sowie Gerätebetreuung Shimadzu); Enzymmessung (photometrisch, respiratorisch); Zellaufschluss-Methoden |
| Monika Neytschev |
Anreicherung/Isolierung von MO; Schadstoffabbau (Kinetik und Stöchiometrie), Fermenterkulturen incl. diverser Kultivierungsregime, Radiometrische Messungen, Enzymmessung (photometrisch, respiratorisch); Zellaufschluss-Methoden |
AG Bioverfügbarkeit (Lukas Y. Wick)
| Jana Reichenbach |
Chemotaxie; Kontaktwinkelmessungen mikrobieller Oberflächen; Kultivierung von Bakterien und Pilzen; Sapromat-Analytik; Spiralplattierer mit automatisierter Kolonieauszählung |
| Rita Remer |
HPLC (UV/Fluoreszenz/Brechungsindex); Ionenchromatographie; Aminosäuren-Analyse; Kultivierung von Bakterien und Pilzen |
| Birgit Würz |
GC-Headspace; GC-MS; Zeta-Sizer nano: Bestimmung von Ladung und Zeta-Potential von Kolloiden/Makromolekülen; Extraktion und Analyse von organischen Spurenstoffen |
AG Flow-Cytometrie (Susann Müller)
| Christine Süring |
Fermentation; Zytometrie; Image Analyse |
| Thomas Hübschmann |
Zytometrie; Zellsortierung; Laserverantwortlicher UFZ |
AG Ökothermodynamik/Biokalorimetrie (Thomas Maskow)
| Martina Effenberger |
Kompensationskalorimetrie (BFK1); Isotherme Titrationskalorimetrie; Mikrokalorimetrie; HPLC-Analytik |
| Karin Lange |
Hochauflösende Respirometrie; Luminometrie; Fermentationen |
| Sven Paufler |
Fermentationskalorimetrie (RC1); Hard- und Software für Datenaquisition von Kalorimeterdaten; Abgasanalytik; Fermentationen; Verbrennungskalorimetrie |
AG Mikrobielle Ökosystem Services (Annelie Wendeberg)/AG Mikrobiologie Anaerober Systeme (Sabine Kleinsteuber)
| Ute Lohse |
DNA-Extraktion; PCR und T-RFLP-Fingerprinting; Klonierung und Sequenzierung (inkl. Software); FISH, CARD-FISH; anaerobe Probenahme |
AG Biotrophe Pflanzen-Mikroben-Interaktionen (Thomas Fester)
| Angelika Wichmann |
GC-MS; Fettsäureanalytik; Chemostat-Bakterienkultivierung |
| Elke Häusler |
PCR; Klonierung und Sequenzierung; T-RFLP (AM-Pilze) |
AG Mikrobielle Systemökologie (Antonis Chatzinotas)
| Anett Heidtmann |
DNA-/RNA-Isolierung; PCR (16S rRNA, funktionelle Gene) und T-RFLP; Sequenzierung (inkl. Software) und ARB-Software (Stammbäume); Mikroskopie; FISH und Hybridisierungen; Phagen (Aufkonzentrierung, Molekularbiologie) |
| Verena Jaschik |
DNA-/RNA-Isolierung; PCR (16 und 18S rRNA Gene) und T-RFLP; Sequenzierung (inkl. Software); Quantitative PCR; Stammsammlung Protisten und Bakterien |
AG Umweltmykologie (Dietmar Schlosser)
| Madlen Schröter |
Kryokonservierung von Mikroorganismen; Ultra Performance Liquid Chromatography (UPLC); Kultivierung von Pilzen |
Nährbodenküche und Entsorgung (Martina Kolbe)
| Martina Kolbe |
Aerobe und anaerobe Nährmedien; Autoklavieren spezieller Laborgeräte und Lösungen; Spezifische Sterilisations- und Desinfektionmethoden; Mikrobiologischen Entsorgung, Sterilisation und Desinfektion; Fragen zu Nährmedien |
| Monika Körnig |
Mikrobiologische Entsorgung; Heißluftsterilisation; Reinigung von Laborglas; Autoklavieren |
| Katrin Lübke |
Aerobe und anaerobe Nährmedien und Lösungen; Heißluftsterilisation; Autoklavieren; Mikrobiologische Entsorgung |
AG Arsolux (Sonja Hahn-Tomer)
| Andreas Kölsch |
Anreicherung/Kultivierung von Bakterien (Schüttelkolben/Fermentation) Luminometrische Messung (Luciferase) Konservierung von Mikroorganismen durch Gefriertrocknung |